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Contrôle de la rouille de la tige de l'orge - Comment arrêter la rouille de la tige des plantes d'orge

Contrôle de la rouille de la tige de l'orge - Comment arrêter la rouille de la tige des plantes d'orge


Par: Mary Ellen Ellis

La rouille des tiges est une maladie économiquement importante car elle affecte et peut sérieusement réduire le rendement du blé et de l'orge. La rouille de la tige de l'orge peut dévaster votre récolte si vous cultivez ce grain, mais la sensibilisation et la reconnaissance précoce des signes peuvent vous aider à minimiser les dommages.

Symptômes de rouille de la tige d'orge

La rouille des tiges est une maladie fongique qui affecte la production céréalière depuis plus de cent ans. Le champignon continue d'évoluer pour surmonter toute résistance naturelle de l'orge, de sorte que les variétés de céréales qui étaient autrefois résistantes à la maladie ne le sont peut-être plus.

Vous verrez les lésions caractéristiques de couleur rouille de l’orge avec de la rouille de la tige sur les feuilles, la gaine des feuilles et les tiges. Les lésions sont de couleur rouge-orange à brune et sont allongées par rapport aux lésions de rouille des feuilles, qui sont des taches plus petites.

La rouille des tiges provoquera également la déchirure des couches externes de tissu des tiges, des feuilles et des gaines des feuilles d'orge. Cela doit être visible à l'œil nu. Une distinction majeure entre les autres types de maladies de la rouille est que la rouille des tiges infecte les tiges de l'orge, contrairement aux autres maladies.

Comment traiter la rouille des tiges d'orge

Parce qu'elle affecte plusieurs parties de la plante, la rouille de la tige de l'orge est plus dommageable que les autres maladies de la rouille. La perte de rendement à laquelle vous pouvez vous attendre dépend de plusieurs facteurs. Par exemple, plus tôt dans la croissance de la maladie à peine s'installe, plus les dégâts seront graves. Les conditions météorologiques humides et chaudes peuvent également aggraver l'infection.

Un contrôle efficace de la rouille de la tige de l'orge commence par l'utilisation de variétés de céréales résistantes aux maladies. Même ceux qui n'y résistent pas entièrement sont utiles car la maladie est plus susceptible de s'installer plus tard, et dans ce cas, une grande partie de la récolte peut être sauvée.

La maladie survit sur des céréales qui ont été semées spontanément ou spontanément, puis se propage à de nouvelles plantes au printemps. Pour éviter cette propagation, vous pouvez supprimer la croissance supplémentaire. Le tirage manuel, le pâturage et l'utilisation d'herbicides sont tous des moyens utiles pour se débarrasser des vecteurs potentiels.

Enfin, vous pouvez traiter la rouille de la tige de l'orge lorsque vous la voyez sur votre grain. Des fongicides foliaires peuvent être appliqués pour gérer la maladie et il est préférable de les utiliser aux premiers stades de l'infection. Ils sont également mieux appliqués entre l'émergence de la feuille étendard et la floraison pour obtenir les meilleurs résultats. Appliquer plus fortement si les conditions météorologiques favorisent la maladie.

Cet article a été mis à jour pour la dernière fois le


Traitements à l'orge, maladies et ravageurs les plus courants de cette céréale


L'orge (Hordeum vulgare) est l'une des premières plantes cultivées, qui a été cultivée depuis l'âge de pierre, lorsque les hommes ont commencé à faire de l'agriculture. De nos jours, l'orge est largement répandue dans les zones équatoriales et arctiques. Cette plante est utilisée à la fois dans notre alimentation et dans celle des animaux. L'orge est également utilisée dans la fabrication de la bière. L'orge contient de grandes quantités de manganèse, de phosphore, de cuivre, de magnésium, de fer, de zinc, de potassium et constitue également une source importante de fibres. L'orge est très similaire au blé, c'est pourquoi ils partagent un grand nombre de maladies et de ravageurs.


Maladies de rouille trouvées dans le blé: 3 types | Pathologie végétale

Les maladies de la rouille du blé sont considérées comme les agents pathogènes les plus destructeurs de la culture.

Cependant, la récolte de blé souffre de trois types de rouilles:

(1) Rouille noire ou de la tige causée par Puccinia graminis f. sp. tritici,

(2) rouille jaune ou striée causée par Puccinia striiformis, et

(3) Rouille brune ou foliaire causée par Puccinia recondita.

Les dommages causés au blé sont principalement dus à la rouille brune ou foliaire et à la rouille jaune ou rayée. La rouille noire ou de la tige apparaît assez tardivement dans les principales zones de culture du blé et normalement la culture échappe à de graves dommages.

Type # 1. Rouille noire ou de la tige du blé (Triticum Vulgare):

La rouille noire ou de la tige du blé est répandue dans le monde entier partout où des variétés de blé sensibles sont cultivées. En Inde, en particulier dans la partie nord, cette maladie apparaît assez tardivement pendant la saison de croissance (fin mars ou même plus tard). C'est généralement le moment où le blé mûrit et, par conséquent, la culture échappe à beaucoup de dégâts.

La rouille noire ou de la tige attaque les parties aériennes comme les feuilles, les gaines foliaires et les tiges qui sont souvent les plus gravement touchées. En raison de cette maladie, la qualité et le rendement des céréales sont considérablement réduits. Les plantes infectées produisent généralement moins de talles, produisent moins de grains par rapport aux plus saines, et les graines sont de plus petite taille.

L'organisme causal de la rouille de la tige, un champignon appelé Puccinia graminis, a été reconnu pour la première fois par Persoon en 1797. Mais, sa véritable histoire de vie a été explorée en 1865 lorsque de Barry, par des expériences d'inoculation, a réussi à démontrer que P. graminis a besoin de deux hôtes , blé et épine-vinette, pour compléter son cycle de vie.

Les symptômes se présentent sous la forme de pustules allongées, étroites et elliptiques brun rougeâtre sur la tige, la gaine et les feuilles. Les tiges sont souvent les plus gravement touchées.

Ces pustules (appelées urédopustules ou uredia car elles portent un type de spores appelées urédospores) sont généralement parallèles au grand axe des parties infectées, varient d'un quart de pouce à plus de longueur, fusionnent fréquemment les unes avec les autres et éclatent tôt en exposant masse poudreuse d'urédospores rougeâtres ou rouille. On peut cependant voir les franges proéminentes de l'épiderme rompu tout autour de la partie éclatée des urédopustules.

Plus tard dans la saison, lorsque les plants de blé sont sur le point de mûrir, un autre type de pustules (appelées téleutopustules ou telia car elles portent un type de spores appelé téleutospores ou téliospores) se développent soit à la suite de la transformation des urédopustules, soit indépendamment des urédopustules.

Dans la première condition, la production d'urédospores dans les urédopustules est progressivement remplacée par la production de téleutospores, ce qui entraîne des pustules passant progressivement du brun rougeâtre au noir car les téleutospores sont de couleur brun foncé. Les téleutopustules éclatent de la même manière que les urédopustules et exposent les téleutospores.

Organisme causal:

Le pathogène fongique est une rouille macrocyclique et hétéroïque qui complète son cycle de vie au moyen de cinq types différents de spores - urédospores, téleutospores (tétiospores), basidiospores, pycniospores ou spermatie et éciospores. Les uredo- et téleutospores se trouvent sur le blé, les basidiospores sur les chaumes ou la paille tombées dans le sol à la suite de la germination des téleutospores, et les pycniospores (spermatia) et les éciospores sur les feuilles d'épine-vinette (Berberis vulgaris).

Barberry est l'hôte alternatif du pathogène. L'agent pathogène est un biotrophe. Cependant, le mycélium de P. graminis tritici est incolore et intercellulaire envoyant de petites haustorias rondes ou ramifiées à l'intérieur des cellules hôtes. Une masse d'hyphes s'accumule sous l'épiderme et développe des pustules.

Les urédospores sont dicaryotes (binucléées), ovales, unicellulaires, de couleur rouge brique ou rouille, pourvues de minuscules structures épineuses sur le mur, et chacune mesure 25-30 x 17-20 µm. Ils possèdent quatre pores de germes le long d'une bande équatoriale et sont le seul type de spores de rouille de la tige qui peuvent infecter l'hôte sur lequel ils sont produits, c'est-à-dire que les urédospores sont produites sur le blé et peuvent ensuite réinfecter le blé en produisant plus d'uredia et d'urédospores.

Les téleutospores sont constituées de deux cellules lisses à paroi épaisse, superposées et dicaryotes (binucléées). Ils sont en forme de fuseau, à parois épaisses, de couleur brun foncé, avec un sommet arrondi ou pointu, et mesurent 40-46 x 15-20 µm. Chacune des cellules de téleutospore est constituée d'un seul pore germinatif. Les téleutospores sont les spores finales produites sur le blé et servent de «spores de repos».

Les deux noyaux se trouvant dans chaque cellule d'une téleutospore mature fusionnent ensemble (caryogamie), quand elle est encore sur le blé ou pendant la période de repos dans le sol aboutissant à un noyau diploïde. Chaque cellule diploïde germe maintenant donnant naissance à un «promycélium» (généralement appelé «basidium») dans lequel le noyau diploïde migre et subit une méiose produisant quatre noyaux haploïdes. La méiose est suivie d'une septation donnant naissance à quatre cellules dans un promycélium contenant chacune un seul noyau haploïde.

Ces quatre cellules produisent quatre «basidiospores» sur les stérigmates. Les basidiospores matures sont déchargées de force, emportées par le vent, tombent sur les feuilles d'épine-vinette et germent sur celles-ci. Ils développent des structures en forme de flacon appelées «pycnia» ou «spermogonie» sur la surface supérieure des feuilles d'épine-vinette. Les pycnies sont ostiolées et consistent en pycniospores ou spermathies de type «+» ou «mâle» et des hyphes réceptifs de type «-» ou «femelle» et vice versa selon la nature «+» ou «-» de la pycnie (spermogonie). La fusion sexuelle se produit entre la spermatie et les hyphes réceptifs de souches opposées.

Le mycélium dicaryote ainsi développé forme alors un autre type de structures, à savoir, «aecia» sur la face inférieure des feuilles d'épine-vinette. Les écies sont des structures jaunes en forme de coupe entourées par un péridium (paroi), qui se rompt plus tard en donnant une apparence en forme de cloche à l’écie (maintenant appelée coupe aecidiale).

Chaque cupule fécidienne contient des «éciospores» produites en chaînes. Les éciospores sont jaunes, échinulées, chacune avec six pores germinatifs. Lors de la germination, les éciospores produisent des tubes germinatifs qui ne désinfectent que le blé et jamais l'épine-vinette. La plante de blé ainsi infectée par les éciospores produit des urédopustules contenant des urédospores.

Un aspect très intéressant de ce pathogène causant la rouille, qui a été étudié récemment en Inde et ailleurs, est que le cycle de vie est le moins préoccupé par le cycle de la maladie et la récidive annuelle. Le cycle de la maladie ne concerne généralement que les urédospores, en particulier dans notre pays.

Bien que le champignon persiste dans les régions plus froides sous forme de téleutospores, qui restent dormantes sur le chaume ou la paille tombant généralement sur le sol pendant plusieurs mois (au moins 18 mois) pour terminer leur cycle de vie, les températures élevées qui prévalent dans les plaines indiennes après la récolte du blé. tuer les urédospores ainsi que les téleutospores.

Cela montre qu'il n'y a pas de source locale d'inoculum primaire dans les plaines de l'Inde. Mehta (1940, 1952) a examiné la survie de la source d'inoculum primaire pendant l'été sous la forme d'urédospores produites dans les conditions plus fraîches de collines telles que l'Himalaya au nord, en particulier le centre du Népal, et les collines Nilgiri et Pulney au sud.

Mais, si l'Himalaya était le foyer actif de source d'inoculum primaire, la rouille des tiges aurait dû apparaître normalement dans les contreforts et les plaines adjacentes dès la première semaine de février, mais elle apparaît beaucoup plus tard à la fin du mois de mars ou en avril. En revanche, cette rouille apparaît dès décembre-janvier dans de nombreux endroits du sud de l'Inde.

Joshi (1986) a signalé, cependant, que la principale source d'inoculum primaire de la rouille noire du blé dans les plaines se trouve dans les collines du sud et les collines du nord de l'Inde y contribuent très peu car les conditions environnementales dans les plaines au moment où l'inoculum primaire arrive des collines du nord ne sont pas favorables à la rouille. Les perturbations cycloniques originaires du golfe du Bengale contribuent à la dissémination des urédospores (source de l'infection primaire) par les courants d'air et les pluies.

(ii) Infection primaire:

Les urédospores transportées dans les plaines de l'Inde fonctionnent comme source d'infection primaire. Ils germent sur des hôtes sains donnant naissance à des mycéliums dicaryotes. Les mycéliums ainsi produits pénètrent à l'intérieur de l'hôte, se ramifient fréquemment, se propagent dans les espaces intercellulaires, développent des urédopustules et aboutissent à la production d'une nouvelle récolte d'urédospores seulement dans les 5 à 6 jours si les conditions sont favorables.

(iii) Infection secondaire:

Les urédospores produites à la suite d'une infection primaire sont la principale source d'infections secondaires pendant la saison de croissance. Étant donné que les urédospores sont capables de germer et de produire une nouvelle récolte d'urédospores dans un court laps de temps (5-6 jours seulement) si les conditions sont favorables, elles entraînent de nombreux cycles d'infection secondaire au cours d'une saison de croissance, ajoutant ainsi à la gravité de la maladie. . C'est la raison pour laquelle les urédospores sont également appelées «spores répétitives».

Facteurs prédisposants:

La température joue un rôle crucial dans l'incidence de la rouille des tiges. Les températures minimale, optimale et maximale pour la germination des urédospores sont respectivement de 20 ° C, 24 ° C et 30 ° C. Lorsque les températures sont inférieures à celles indiquées, les urédospores mettent plus de temps à provoquer une infection, c'est-à-dire que la période d'incubation est augmentée. Cela entraîne moins de cycles d'infection pendant la saison de croissance et un développement très lent de la maladie.

L'humidité est également un facteur qui détermine l'infection par la rouille de la tige. La disponibilité d'eau libre et de dépôts de rosée à la surface des feuilles et d'autres parties sensibles de l'hôte au moins pendant deux heures est essentielle pour une germination rapide des urédospores. Cependant, si l'on prend la température et l'humidité ensemble, la maladie devient grave dans une saison d'humidité abondante lorsque les températures pendant une grande partie de la journée sont autour de 15-20 ° C.

(i) Bien que le champignon pousse bien sur son hôte alternatif pour terminer son cycle de vie, cette survie de l'agent pathogène contribue le moins au développement de la maladie en Inde. Dans notre pays, cependant, le problème est de perpétuer l'agent pathogène sur les plants de blé auto-semés et d'autres hôtes collatéraux poussant sur les collines. Si cette source pouvait être détruite, les possibilités d'incidence de la rouille dans les plaines pourraient être minimisées ou complètement éliminées.

Mais cela semble pratiquement impossible car de tels hôtes peuvent être présents dans des endroits très inaccessibles où leur recherche peut être presque impossible. Cependant, il a été suggéré que si des variétés immunitaires ou résistantes pour les régions vallonnées pouvaient être cultivées et que la zone en serait saturée, la quantité d'inoculum pourrait être considérablement minimisée.

(ii) La culture mixte de blé et d'orge avec une culture appropriée offre une bonne assurance-récolte même en cas d'échec de la récolte principale.

(iii) La réduction de la proportion d'azote dans le rapport N.RK dans un engrais peut aider à réduire l'incidence de la rouille chez une variété sensible.

(iv) Divers produits chimiques ont été testés contre l'incidence de la rouille. Ceux-ci comprennent - la poussière de soufre Nabam et ZnSo 4 à 14 jours d'intervalle Zineb, Maneb et Zinc sous forme de quatre pulvérisations foliaires à 10-14 jours d'intervalle Dithane M-45 antibiotiques et fongicides systémiques comme Vivatx, Plantvax en pulvérisation foliaire et traitement des semences. Le propiconazole (inclinaison) à 0,1% s'est avéré efficace pour contrôler la rouille de la tige (également les rouilles brunes et jaunes) car il persiste pendant 12 jours et inhibe complètement la germination des urédospores.

(v) Puisque le pathogène développe de nouvelles races physiologiques, les variétés résistantes d'une époque deviennent sensibles à l'autre. C'est la raison pour laquelle cet aspect nécessite une enquête continue suivie de la recommandation de temps en temps de variétés résistantes. Tous les programmes d'amélioration du blé coordonnés par l'Inde recommandent des variétés résistantes à la rouille de temps en temps. À l'heure actuelle, des variétés comme HD 2278. HW 741, WL 614, Sonara 63, 64, etc. sont considérées comme résistantes à la rouille de la tige du blé.

Taper # 2. Rouille jaune ou rayée du blé:

La rouille jaune ou rayée est principalement limitée au nord et au nord-ouest de l'Inde et se rencontre également dans les collines Nilgiri et Pulney du sud de l'Inde. Cependant, il est totalement absent de l'Inde péninsulaire.

Cette rouille a été trouvée sur la nouvelle récolte de blé semée sur les collines pour apparaître dès novembre-décembre, et dans les collines du nord de l'Inde en décembre ou dans la première quinzaine de janvier. Il est généralement vu d'abord dans les collines du nord du pied et dans les zones adjacentes telles que Gurudaspur et Roper au Pendjab et Pantnagar dans la région tarai de l'Uttaranchal.

La rouille jaune provoque des pertes importantes dans le champ en raison de la destruction du feuillage suivie, parfois, de la stérilité des épillets, ou de la production de grains mal ratatinés. La culture extensive de la variété de blé Kalyansona sur une vaste zone du nord-ouest de l'Inde a aggravé le problème de la rouille jaune en 1968-69 et sa dégradation en 1970-71 était le résultat d'une nouvelle race virulente de l'agent pathogène.

Les symptômes de cette maladie deviennent normalement évidents plus tôt que la rouille noire ou la rouille noire. Lorsque l'hôte est légèrement attaqué, les symptômes apparaissent principalement sur les feuilles, mais, si l'infection est sévère, les autres parties aériennes telles que la gaine, les tiges et les glumes sont également attaquées et elles présentent une tête d'épingle de couleur jaune vif. urédopustules disposées en longues stries. Une infection grave entraîne le dessèchement des feuilles. Les teleutosori (telia) apparaissent principalement sur la surface inférieure des feuilles sous la forme de stries de couleur noire.

Organisme causal:

L'agent pathogène est un biotrophe et son hôte principal est le blé. Il produit des urédospores dans les uredosori et des téliospores dans les téliosori. Les urédospores sont dispersées par le vent et germent à la surface des feuilles et pénètrent indirectement par les ouvertures stomatiques. À l'intérieur de la feuille hôte, le champignon se développe dans les espaces intercellulaires sous la forme d'un mycélium dicaryote très ramifié. Des haustorias intracellulaires se forment, qui pénètrent dans les cellules hôtes et absorbent la nourriture. Bientôt, il commence à produire de l'uredo sori sous l'épiderme.

Les urédospores sont presque rondes, échinulées avec un épispore hyalin. Chaque urédospore possède 6 à 10 pores germinatifs dispersés. Les téleutospores sont oblongues à cunéiformes avec un sommet presque aplati. Les deux pustules sont couvertes par l'épiderme de l'hôte. Les téleutospores sont bicellulaires et sont entrecoupées de paraphyses unicellulaires de couleur brune.

Aucun hôte intermédiaire pour les stades pycnial et écial du champignon n'a été découvert.

Le champignon est hétéroïque mais son hôte alternatif n'est pas encore connu. Le champignon survit dans les collines pendant les mois d'été à une altitude d'environ 1990 m et plus dans le blé spontané ou sur certaines mauvaises herbes. Environ 90 mauvaises herbes (par exemple, Agrophyron semicostatum, Bromus catharticus, B. japonicus, Hordeum murinum, etc.) sont connues pour agir comme hôtes collatéraux du champignon.

Une herbe, Muhlenbergia hygelli, poussant à l'état sauvage dans les collines de Shimla, a été trouvée pour héberger la rouille jaune, mais son rôle dans la récurrence annuelle n'a pas encore été établi. La source de l'infection primaire sont les urédospores, qui proviennent des collines et germent sur les plants de blé. Les téleutospores sont capables de germer immédiatement sans période résultante.

(i) L'utilisation de variétés résistantes est le meilleur moyen de lutter contre la rouille.

(ii) Les mesures de contrôle chimique utilisées pour la rouille noire ou la rouille noire peuvent être utilisées pour lutter contre la maladie.

Taper # 3. Rouille brune ou foliaire du blé:

La rouille brune ou foliaire se limite au blé et à certaines graminées et attaque les feuilles presque exclusivement, rarement les gaines foliaires et très rarement les tiges. Cette rouille se produit dans toutes les régions de notre pays, mais est plus fréquente dans les régions du nord et de l'est que dans la péninsule indienne. C'est la rouille la plus précoce qui apparaît sur le blé dans certaines parties du Bihar, de l'Uttar Pradesh, de l'Uttaranchal et du Pendjab et, avec la rouille jaune, cause de graves dommages entraînant de grandes pertes pour la récolte.

La rouille brune ou foliaire est apparue sous forme épidémique dans la région du nord-ouest du pays en 1971-72 et 1972-73, entraînant la perte de 0,8 à 1,0 million de tonnes et 1,5 million de tonnes de blé, respectivement. Il a été signalé que l'épidémie de rouille brune sur la variété de blé Sonalika dans l'Uttar Pradesh et dans certaines parties du Bihar a causé une perte d'un million de tonnes de blé.

Les symptômes de la maladie apparaissent sur les feuilles sous la forme de pustules de couleur orange vif. Ces pustules, à maturité, virent au brun. Les pustules, qui virent de l'orange au brun, sont les uredosori.

Ces derniers ne sont jamais en rangées mais peuvent être rassemblés en petits groupes ou peuvent être irrégulièrement dispersés sur toute la surface des feuilles. Ils sont plus gros que l'uredia de la maladie de la rouille jaune. Cependant, le teleutosori (teliosori) échoue à se développer ou se développe à la fin de la maladie. Celles-ci sont petites, linéaires, de couleur noire et restent couvertes par l'épiderme.

Une forte rouille du feuillage se traduit par un système racinaire mal développé, une mauvaise qualité et quantité de grains et un rendement réduit en paille.

Organisme causal:

L'agent pathogène est un biotrophe et hétéroïque. Son hôte principal est le blé et l'hôte secondaire est Thalictrum. Chez le blé, le mycélium dicaryote secondaire se développe dans les espaces intercellulaires. Il pénètre par voie intracelullaire des branches spéciales dans les cellules de l'hôte, qui se transforment en haustoria. Les haustoria sont les principaux organes de la nutrition et absorbent la nourriture de l'hôte.

Habituellement, le champignon produit de l'uredosori dans les feuilles de l'hôte. Les urédospores sont brunes, rondes ou oblongues, échinutées, pédonculées et ont 7 à 10 pores germinatifs. Ces spores sont dispersées dans l'air et provoquent une infection à d'autres plantes. L'infection par les tubes germinatifs des urédospores a lieu à travers les stomates de chaque côté de la feuille.

Les téliospores sont bicellulaires avec le sommet aplati de la cellule supérieure, marron et lisse. Ils sont produits en teliosori, qui sont petits, linéaires, de couleur noire et recouverts par l'épiderme. Les paraphyses, abondamment présentes, divisent le téliosore en de nombreuses chambres. Le nombre de chambres dans chaque téliosore est supérieur à celui de la rouille jaune.

Les téliospores germent pour produire des basides et des basidiospores, qui provoquent normalement une infection chez un hôte alternatif. L'hôte alternatif fonctionnel, qui n'a pas été signalé en Inde, est Isopyrum fumariodes. En Inde, l'hôte non fonctionnel est Thalictrum, qui se produit généralement dans les collines. Les stades spermogonial et écial du champignon n'ont pas été signalés.

La rouille brune ou foliaire survit pendant l'été à des altitudes de 1450-2050 m sur les collines de Nilgiri et de Pulney dans le sud et de l'Himalaya dans le nord de l'Inde, car elle résiste mieux au temps chaud que la rouille jaune ou rayée. Il a deux foyers d'infection en Inde.

Si l'on prend en compte l'ensemble du pays, les urédospores sont dispersées dans l'air du site de survie et la rouille s'installe début janvier et parfois même plus tôt dans les plaines du Tamil Nadu et du Karnataka au sud, et dans les contreforts de l'Himalaya. dans le nord.

La première accumulation d'inoculum a lieu dans les plaines du Karnataka au sud et les urédospores sont soufflées par le vent vers le nord vers le Maharashtra et le Madhya Pradesh. Dans le même temps, l'inoculum (urédospores) des contreforts de l'Himalaya se déplace vers les plaines du nord.

Par conséquent, la rouille brune apparaît un peu plus tard dans les contreforts occidentaux du nord de l'Inde. Les populations de rouille du Nord et du Sud, se déplacent dans des directions opposées, se fondant finalement l'une dans l'autre. Cela peut entraîner des épidémies dans n'importe quelle partie du pays si les conditions climatiques deviennent favorables.

Une fois que l'infection est établie sur le blé, les urédospores sont produites rapidement et à plusieurs reprises dans l'uredosori, sont dispersées sur des feuilles saines, provoquant des infections secondaires. Ce dernier peut avoir lieu plusieurs fois au cours d'une saison de croissance particulière.

(i) Comme la rouille noire, l'utilisation de variétés résistantes est considérée comme la meilleure mesure de lutte contre la maladie.

(ii) La gestion utilisant des mesures chimiques est presque la même que dans le cas de la rouille noire. Cependant, une ou deux pulvérisations foliaires de fongicides tels que les dithiocarbamates et le RH-124 dans des conditions de terrain ont permis un bon contrôle de la maladie.

(iii) Étant donné que l'azote a tendance à augmenter la sensibilité tandis que la potasse produit un effet opposé, la réduction de la proportion d'azote dans le rapport NPK peut aider à réduire l'incidence de la rouille dans les variétés sensibles.


Cycle de la maladie de la rouille

La principale source d'inoculum pour la rouille des feuilles est les plants d'orge spontanés verts qui survivent pendant l'été. Le développement de la rouille des feuilles est plus rapide par temps chaud (15-20 ° C) humide (pluie ou rosée). Les cultures semées avant mai sont souvent plus gravement infectées.

L’étoile de Bethléem (Ornithogalum umbellatum) la mauvaise herbe peut également être une source d'inoculum et est un hôte pour le stade sexuel alternatif des téléospores. Le cycle sexuel entraîne la formation de nouvelles souches de rouille, augmentant l'apparition de nouvelles souches virulentes capables de surmonter les résistances. Actuellement, la mauvaise herbe Star of Bethlehem se trouve en Australie du Sud avec des occurrences isolées dans la zone de culture victorienne.


Orge (Hordeum vulgare) -Rouille de la tige

Cause Un champignon, Puccinia graminis, qui hiverne sur le chaume, la paille, certaines herbes sauvages, le blé, le seigle, le triticale et l'orge spontanée. Les hôtes alternatifs sont des espèces d'épine-vinette. La maladie n'est généralement pas un problème en Oregon ou en Idaho.

Symptômes Le stade de la rouille rouge ou des spores d'été (uredinia) est évident sur les tiges, les gaines foliaires, les glumes, les arêtes et les feuilles sous forme de pustules allongées contenant des masses de spores brun rougeâtre. Le stade de la rouille noire ou des spores d'automne (telia) ressemble au stade de la rouille rouge à l'exception de la couleur noire.

  • Éradiquer l'épine-vinette dans les zones céréalières du nord-est de l'Oregon.
  • Tout ce qui retarde la maturité des cultures, comme les hautes altitudes, les températures fraîches, les variétés, les herbicides ou les pratiques de plantation, rend l'orge plus vulnérable à la rouille des tiges.

Lutte chimique Utiliser sous une forte pression de maladie ou lors de l'élevage d'une variété inhabituellement sensible.

Des applications foliaires peuvent être effectuées lorsque la maladie est sévère.

  • Badge SC (groupe M1) à raison de 0,5 à 1,8 pintes / A à des intervalles d'au moins 10 jours. L'intervalle de pré-récolte est de 0 jour. Réentrée de 48 heures.
  • Les fongicides inhibiteurs de la déméthylation (DMI) (groupe 3) sont étiquetés pour utilisation.
    • Bumper 41.8 EC ou Bumper ES à 4 fl oz / A sur un minimum de 14 jours d'intervalle pour pas plus de deux (2) applications, une (1) application maximum si récolte pour le fourrage ou le foin. Ne pas appliquer dans les 45 jours suivant la récolte pour le grain et la paille 30 jours pour le fourrage ou le foin. Réentrée de 12 heures.
    • Miravis Ace B à 4 fl oz / A à l'émergence de la feuille étendard (stade 8 de Feekes) mais pas après Feekes 10.5.4. Ne pas appliquer dans les 7 jours suivant la récolte pour le fourrage ou le foin. Réentrée de 12 heures.
    • Tebuzol 3.6F à 4 fl oz / A en une seule application par saison. Ne pas appliquer dans les 30 jours suivant la récolte. Réentrée de 12 heures.
    • Incliner à 4 oz liq. À au moins 14 jours d'intervalle pour pas plus de deux (2) applications, une (1) application maximum si récolte pour le fourrage ou le foin. Appliquer lorsque la feuille étendard est à 50% ou complètement levée, jusqu'à l'émergence tardive de l'épi (Feekes 10.5). L'intervalle avant récolte est de 7 jours pour le fourrage et le foin. Réentrée de 12 heures.
  • Regalia (groupe P5) à 1 à 2 pintes / A à des intervalles de 7 à 10 jours en commençant avant l'infection. Sous une forte pression de maladie, utiliser en combinaison avec un autre fongicide. Réentrée de 4 heures. O
  • Les fongicides à base de strobilurine (groupe 11) sont étiquetés pour utilisation. Ne pas faire plus d'une (1) application d'un fongicide du groupe 11 par saison.
    • Titre de 6 à 9 oz liq / A. Appliquer au plus tard à 50% d'émergence de l'épi (Feekes 10.3). L'intervalle avant récolte est de 14 jours pour le foin et le fourrage. Réentrée de 12 heures.
    • Quadris Flowable à 9 à 12 fl oz / A appliqué avant le développement de la maladie, jusqu'à l'émergence tardive de l'épi (Feekes 10.5). Ne pas appliquer dans les 7 jours suivant le pâturage. L'intervalle avant récolte est de 7 jours pour le fourrage et le foin. Réentrée de 4 heures.
  • Des fongicides prémélangés sont disponibles. Ne pas faire plus d'une (1) application d'un fongicide du groupe 11 avant d'alterner avec un fongicide étiqueté avec un mode d'action différent.
    • Priaxor (Groupe 7 + 11) à 4 à 8 oz / A. Ne pas appliquer après 50% d'émergence de l'épi (stade Feekes 10.3). L'intervalle avant la récolte est de 14 jours pour le fourrage et les aliments hachés. Réentrée de 12 heures.
    • Quilt ou Quilt Xcel (Groupe 3 + 11) à 10,5 à 14 oz liq / A lorsque la feuille de drapeau est à 50% à complètement émergée. Les applications ne peuvent pas être effectuées à moins de 14 jours d'intervalle et peuvent être appliquées jusqu'au stade de croissance Feekes 10.5. Ne pas faire plus de deux (2) applications par saison. L'intervalle avant récolte est de 7 jours pour le fourrage et le foin. Réentrée de 12 heures.
    • Stratego (groupe 3 + 11) à 7 fl oz / A ou Stratego YLD à 2,3 fl oz / A. Ne pas appliquer après la levée de la feuille étendard (stade Feekes 8). Ne pas appliquer dans les 40 jours suivant la récolte. Voir l'étiquette pour les restrictions de pâturage, de fourrage et de foin. Réentrée de 12 heures.
    • Trivapro (groupe 3 + 7 + 11) à 9,4 à 13,7 oz / A à partir du moment où la feuille étendard est à 50% jusqu'à la pleine émergence, jusqu'à l'émergence complète de la tête. Ne pas faire plus de deux (2) applications séquentielles de Trivapro ou d'autres fongicides du groupe 7 ou du groupe 11. L'intervalle avant récolte est de 7 jours pour le fourrage et le foin, 45 jours pour le grain et la paille. Réentrée de 12 heures.

Contrôle biologique L'efficacité du PNW est inconnue.

  • Ballad Plus à 1 à 4 pintes / A à intervalles de 7 à 14 jours. Efficacité inconnue dans le nord-ouest du Pacifique. Peut être appliqué jusqu'au jour de la récolte. Réentrée de 4 heures. O


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